Вступ
Хвороба котячих подряпин (ХКП) — зоонозна інфекція, що викликається головним чином бактерією Bartonella henselae (B.henselae), рідше Bartonella quintana (B.quintana), поширена в усьому світі. Основним резервуаром B.henselae є домашні коти, інфікування яких відбувається за участі бліх. У людей хвороба виникає при контакті з інфікованим котом внаслідок укусу або подряпин [1].
Захворюваність населення на ХКП постійно вивчається в багатьох країнах світу [2–4]. Проте вірогідних даних щодо рівня захворюваності на цю інфекційну хворобу немає, реєструється вона переважно у вигляді спорадичних випадків. За даними науковців США, щороку 12 000 хворих на ХКП лікуються амбулаторно, а стаціонарного лікування потребують лише 500 пацієнтів. Найчастіше хворіють мешканці півдня США (6,4 випадку/100 000 населення), переважають діти 5–9 років (9,4 випадку/100 000 населення) [5]. Водночас в Іспанії кількість госпіталізованих становить 83,5 %, серед них летальні випадки — 1,3 % [6]. Повідомлення останніх років свідчать про почастішання спалахів ХКП у регіонах з вологим і теплим кліматом, які є основними факторами, що сприяють успішному розмноженню, розвитку й виживанню бліх [5–7].
На сьогодні в Україні загальна статистика ХКП не проводиться, хоча випадки хвороби нерідко фіксуються. Не викликає сумніву, що більшість випадків ХКП не розпізнається, оскільки хвороба має широкий спектр клінічних проявів — від стертих форм до тяжких генералізованих, що обумовлені бактеріємією і проявляються дисемінованим процесом з тяжкими поліорганними ураженнями [4, 6, 8, 9]. Такі хворі можуть бути пацієнтами лікарів різних фахів — онкологів, хірургів, офтальмологів, неврологів, дерматологів. Діагностована ХКП може бути при проведенні цілеспрямованих лабораторних досліджень. Показовими в цьому плані є дані наших спостережень.
Мета дослідження: вивчити особливості клінічних проявів ХКП у дітей за результатами аналізу даних карт стаціонарного хворого, привернути увагу лікарів до нетипових клінічних проявів хвороби й оцінити отримані результати порівняно з описаними в наукових публікаціях, доступних на платформах Medscape, PubMed, Scopus, Web of Science.
Матеріали та методи
Проведено аналіз даних карт стаціонарного хворого у двох дітей, які знаходились на лікуванні у Львівській обласній інфекційній клінічній лікарні (ЛОІКЛ) восени 2022 року, і одного хворого, який потребував хірургічного лікування у 2017 р. Вивчено й узагальнено літературні дані, що стосуються захворюваності, особливостей клінічного перебігу і лікування ХКП у дітей за даними статей, отриманих у результаті пошуку в базах даних PubMed, Scopus, Web of Science, MedScape. Пошук проводили за словами: «хвороба котячих подряпин», «Bartonella henselae», «захворюваність на хворобу котячих подряпин у дітей», «лімфаденіт при хворобі котячих подряпин».
Результати
Клінічний випадок 1. Дівчинка, 8 років, захворіла гостро 04.09.2022, коли з’явилися скарги на біль і набряк у лівій пахвовій ділянці, біль у горлі, температура тіла підвищилася до 38,5 °С. По медичну допомогу звернулася на 10-й день хвороби (14.09.2022) у зв’язку з погіршенням загального стану, збільшенням лімфатичного вузла, посиленням болю та гіперемією шкіри над ним, появою дрібноплямистих висипань на шиї, животі, стегнах, що супроводжувалися підвищенням температури тіла до субфебрильних цифр. Сімейним лікарем діагностовано лімфаденіт пахвової ділянки зліва. Скарлатина? Збільшення лімфатичного вузла трактували як лімфаденіт нез’ясованої етіології, що було підставою до призначення азитроміцину. Упродовж всього періоду гарячки приймала антипіретики у віковій дозі.
На 16-й день хвороби у зв’язку з відсутністю позитивної динаміки від розпочатого в амбулаторних умовах лікування для подальшого обстеження й лікування госпіталізована в ЛОІКЛ.
При надходженні загальний стан дитини середньої тяжкості. Температура тіла 37,2 °С. Шкірні покриви сухі. На окремих ділянках тіла, а саме на обличчі, руках, сліди подряпин кота, дрібноплямисті елементи висипань на шкірі живота (рис. 1).
Склери, кон’юнктива очей і видимі слизові чисті. Губи сухі. Задня стінка ротоглотки гіперемована. Мигдалики чисті. Дихання носом утруднене. Язик вологий, вкритий білим нальотом. Периферичні лімфатичні вузли: болючий, збільшений лімфатичний вузол у лівій аксилярній ділянці (за даними ультразвукового дослідження (УЗД) 4,0 × 5,5 см), інші лімфатичні вузли звичайних розмірів, не болючі при пальпації (рис. 2). З боку внутрішніх органів без патологічних змін. Менінгеальні симптоми відсутні. Ознак вогнищевого ураження центральної нервової системи немає.
З додатково зібраного епіданамнезу вдалося з’ясувати, що дитина упродовж літа була в сільській місцевості й мала постійний контакт з котами. Тому рекомендовано провести серологічне дослідження на рівень антитіл класів М і G до B.henselae.
Лабораторні дослідження. Загальний аналіз крові й біохімічні показники сироватки крові в межах норми. Враховуючи скарги дитини на біль у горлі в початковому періоді хвороби і появу висипань, схожих на такі при скарлатині, з метою диференціальної діагностики проведено бактеріологічне дослідження слизу з ротоглотки на патогенну флору й ревмопроби. Результат виявився дещо несподіваним — виділено S.pyogenes. Ревмопроби в межах норми: СРП +5, АСЛО 90 МО/мл, ревмофактор 6 МО/мл. Така комбінація показників розцінена нами як бактеріоносійство S.pyogenes. Результати серологічного дослідження на причетність до патологічного процесу вірусу Епштейна — Барр і цитомегаловірусу негативні.
07.10.2022 отримано результат серологічного дослідження на рівень антитіл до збудника ХКП: IgM до B.henselae позитивні — 1 : 160 при нормі 1 : < 20 (дослідження проведено в MDI Limbach Berlin). Це дозволило в сукупності з типовою клінічною картиною та епіданамнезом виставити клінічний діагноз ХКП.
Хвора дитина отримала лікування — кларитроміцин 250 мг двічі на добу протягом 14 днів, детоксикаційну терапію. У динаміці через 14 днів проведено УЗД лімфатичного вузла в лівій пахвовій ділянці: спостерігалося значне його зменшення до 3,2 × 2,0 см. Виписана додому в задовільному стані з чіткою позитивною динамікою: нормалізація температури тіла, значне зменшення лімфатичного вузла, відсутність болю при пальпації та гіперемії шкіри над ураженою ділянкою.
Клінічний випадок 2. Хворий К., 13 років, госпіталізований у ЛОІКЛ 09.09.2022 на 21-шу добу хвороби. Захворів 20.08.2022, коли з’явилися елементи висипань на шкірі тулуба, кінцівок. Того ж дня консультований дерматологом. Дитині встановлено діагноз: рожевий лишай Жильбера. Призначено лікування, що включало антигістамінні препарати й місцеве застосування мазі з гідрокортизоном. Через 10 днів (30.08.2022) з’явилися збільшені пахвовий і ліктьовий лімфатичні вузли на лівій руці. 02.09.2022 — болючий пахвинний лімфатичний вузол справа. 07.09.2022 підвищилася температура тіла до 39,0 °С з ознобом. У наступні 2 дні у хлопчика загальний стан погіршувався: турбували збільшені лімфатичні вузли, фебрильна температура тіла 38,5–39,0 °С, загальна слабість. 09.09.2022 з приводу вищеперерахованих скарг звернувся на консультацію в ЛОІКЛ.
/116.jpg)
Лікарем приймального відділення стан хворого розцінено як середньотяжкий. При огляді млявий, сонливий, адинамічний, температура тіла 39,0 °С. Шкіра суха, бліда. На шкірі тулуба, рук поодинокі круглі плямисті висипання рожевого кольору з лущенням. При пальпації болючі, збільшені лімфатичні вузли: ліктьовий 2,5 × 2,0 см зліва, пахвовий — 3,0 × 3,5 см зліва і пахвинний 3,0 × 3,5 см справа. Слизова оболонка ротової порожнини чиста. Задня стінка глотки гіперемована і зерниста. Мигдалики чисті. Язик сухий, обкладений білим нальотом. Тони серця ритмічні, звучні. Частота серцевих скорочень 110/хв, артеріальний тиск 110/70 мм рт.ст. У легенях при аускультації дихання везикулярне. Живіт доступний пальпації. Печінка по краю реберної дуги. Селезінка збільшена на 2 см. Діурез збережений. Менінгеальні симптоми й ознаки вогнищевого ураження центральної нервової системи відсутні.
При зборі епіданамнезу з’ясовано, що за 2 місяці до перших проявів хвороби батьки придбали 5-місячне кошеня, з яким хлопчик грався, спав у ліжку.
Попередній діагноз: ХКП. З метою диференціальної діагностики проведено додаткові обстеження. При рентгенографії органів грудної клітки та електрокардіографії патологічних змін не виявлено. Результати УЗД черевної порожнини: печінка не збільшена в розмірах, паренхіма однорідна. Жовчний міхур скорочений. У воротах печінки кілька лімфатичних вузлів розміром до 1,0 см. Селезінка збільшена, структурно не змінена, розмір 13,0 × 6,0 см. У воротах кілька лімфатичних вузлів до 1,0 см. Підшлункова залоза і нирки — без особливостей, звичайних розмірів. Результати серологічного дослідження сироватки крові до групи герпесвірусів негативні.
Діагноз ХКП виставлено на основі типової клінічної картини, епіданамнезу (контакт з кошеням) і підвищеного рівня антитіл до B.henselae: IgM — 1 : 320 при нормі 1 : < 20 (дослідження проведено в MDI Limbach Berlin). У результаті проведеного лікування (кларитроміцин 250 мг двічі на добу протягом 14 днів, детоксикаційна терапія) хлопчик одужав, виписаний додому в задовільному стані.
Клінічний випадок 3. Хлопчик М., 7 років, госпіталізований 07.02.2017. Захворів на початку січня 2017 року. На задній поверхні лівої гомілки хворого виник нагноєний вузлик (первинний афект) на місці подряпини, завданої домашнім кошеням. Дитина була оглянута педіатром і хірургом, проведено обробку гнійника. Однак через 14 днів підвищилася температура тіла до 37,5 °С, виникло болюче утворення в лівій паховій ділянці. Батьки з дитиною звернулися повторно по медичну допомогу до хірурга, який діагностував паховий лімфаденіт і призначив консервативне лікування: антибіотик (левофлоксацин 250 мг) та антигістамінні препарати. Незважаючи на лікування, протягом 5 днів симптоми зберігалися, температура підвищилась до 38,0 °С, а лімфаденіт навіть прогресував, сформувалися пакети лімфатичних вузлів. Дитина консультована педіатром, інфекціоністом і скерована на стаціонарне лікування. Результати УЗД: печінка не збільшена в розмірах, паренхіма структурно не змінена. Строма печінки не ущільнена, не потовщена. Селезінка незначно збільшена, структурно не змінена, розмір 83 × 28 мм. Підшлункова залоза, жовчний міхур і нирки — без особливостей, звичайних розмірів. Параумбілікально справа візуалізуються лімфатичні вузли розмірами до 14 мм, звичайної ехоструктури. Зліва в паховій ділянці, поширюючись на передню поверхню стегна, візуалізується конгломерат лімфатичних вузлів розмірами від 7 до 15 мм звичайної форми та ехоструктури, дистальніше по передній поверхні стегна — найбільший лімфатичний вузол розміром 22 × 8 мм, з формуванням ділянки розрідження в центральній частині (рис. 3). Справа в паховій ділянці збільшених лімфатичних вузлів не виявлено, поодинокі до 7 мм.
Проведено розкриття і дренування нагноєного лімфатичного вузла, призначено лікування кларитроміцином у дозі 250 мг двічі на добу, і вже на 3-тю добу температура тіла нормалізувалася, регресували явища лімфаденіту.
Діагноз ХКП виставлено на основі типової клінічної картини, даних епіданамнезу (постійний контакт з котами), підвищеного рівня антитіл до B.henselae: IgM 1 : 160 при нормі 1 : < 20 і швидкої позитивної відповіді на антибіотикотерапію кларитроміцином.
Обговорення
ХКП була вперше описана в 1930-х роках, а зв’язок хвороби з котами доведений у 1950-х роках (Р. Дебре). Збудник ХКП — B.henselae — грамнегативна бактерія, яка утворює біоплівку. Вивільнення B.henselae з ніші біоплівки відіграє важливу роль у персистенції бактерії та рецидивах хвороби у хребетних тварин, а також у передачі через переносника — котячих бліх [10]. Котяча блоха (Ctenocephalides felis) є найпоширенішим видом бліх, що паразитують на домашніх котах у всьому світі.
Основним резервуаром B.henselae є свійські коти, особливо кошенята. Звідси і походить друга назва хвороби — феліноз (лат. felinus — котячий). У заражених котів бартонели в слині є завжди, тому що вони накопичуються в слинних залозах тварин у великій кількості. Більшість з тих котів, які хворіють субклінічно, є носіями збудників упродовж років. На сьогодні доведена причетність до поширення хвороби інших свійських тварин, включно з кролями і собаками, а також щурів [11, 12].
Для ХКП характерна сезонність з підвищенням захворюваності восени, піком у грудні та зниженням навесні. Таку закономірність пояснюють сезонністю репродуктивної поведінки кішок, життєдіяльністю бліх, а також тим, що влітку коти більшість часу проводять поза домом Повідомлення останніх десятиліть переконливо свідчать про те, що епідемічні зони мають потенціал для розширення [7, 13].
ХКП, як правило, доброякісна хвороба, що минає самостійно. Зазвичай ХКП розпізнають саме на етапі збільшення лімфатичних вузлів, що співзвучно з описаними нами клінічними випадками. Слід зазначити, що лімфаденіт з’являється набагато пізніше за первинний афект, останній у розпалі захворювання може бути відсутнім, ускладнюючи діагностику [14]. Лімфаденіт утримується протягом декількох місяців. У частини хворих лімфовузли нагноюються з утворенням густого жовтувато-зеленого гною.
Хоча яскравим клінічним проявом хвороби є регіонарна лімфаденопатія в місці котячої подряпини або укусу, слід пам’ятати, що в частини пацієнтів з підтвердженим серологічно діагнозом ХКП лімфаденопатія відсутня, а одним з рідкісних проявів хвороби може бути «лихоманка невідомого походження». Проведені науковцями Ізраїлю дослідження свідчать, що ХКП на початковому етапі не лише розцінюється як лихоманка невідомого походження, але й імітує злоякісне захворювання. При цьому тривалість гарячки може коливатися в межах 4–9 тижнів. У 52 % дорослих пацієнтів лихоманка мала безперервний або рецидивний характер [15]. Щодо захворюваності дітей показовим є випадок тривалої, понад 2 роки, лихоманки та лімфаденопатії в дитини 6 років, спричиненої B.henselae, що був описаний H.K.S. Maria зі співавт. [16].
Шкірні прояви при ХКП часто є причиною помилкових діагнозів. Серед незвичних проявів можуть бути як поодинокі, так і поширені й множинні ураження шкіри, які проявляються у вигляді папул, бляшок, гіперкератозних ділянок або вузликів, можуть нагадувати екзантему при скарлатині, що підтверджують наведені нами клінічні випадки [17].
Інфікування B.henselae варто враховувати в усіх випадках регіонарного лімфаденіту нез’ясованої етіології, лімфаденопатії, гарячки нез’ясованого генезу, шкірних висипань, особливо за умови контакту дитини з котами. В обох наших випадках у хворих дітей був наявний дрібнопапульозний висип на шкірі, що лише ускладнило діагностику хвороби в початковому періоді. Через пізню діагностику ХКП, а отже, і розпочате із запізненням лікування відбувається розвиток ускладнень, які зазвичай вимагають хірургічного втручання, що й відображено в наведеному нами клінічному випадку. Наведені клінічні випадки ХКП у дітей і труднощі їх діагностики свідчать про недостатню обізнаність лікарів з різноманітністю клінічних проявів хвороби.
Суттєве значення для вчасної діагностики хвороби мають дані епідемічного анамнезу (контакт з котами, подряпини чи укуси тварини). Слід зазначити, що цим критеріям не було приділено належної уваги на етапі амбулаторного лікування.
Складні в діагностичному плані атипові прояви ХКП, розвиток яких може виникнути у хворих з ослабленим імунітетом. В основному це нейроретиніт, неврит зорового нерва [18], енцефаліт [19], остеомієліт [20], мікроабсцеси печінки й селезінки [21], вузлувата еритема і ендокардит [3].
Для підтвердження ХКП проводять цілеспрямовані лабораторні дослідження, насамперед використовують серологічні (імуноферментний аналіз із антигенами B.henselae). Проте слід пам’ятати, що чутливість цього методу вважається низькою і його результати можуть бути псевдонегативними. На сьогодні перевагу надають молекулярно-генетичним дослідженням. Виявити ДНК B.henselae можна в зразках крові або біопсії тканин навіть за наявності негативного результату серологічних досліджень [16]. Тому для діагностики ХКП доцільно використовувати обидва методи.
Вирішальне значення для мінімізації ризику передачі збудника має боротьба з блохами. Найбільш показовими в цьому плані є дослідження науковців, які свідчать, що 18 із 20 обстежених бліх були інфіковані B.henselae [22]. Доцільним у боротьбі з захворюванням є серологічна і ПЛР-діагностика тварин на виявлення B.henselae з наступним проведенням, за потреби, антибактеріальної терапії інфікованих тварин [23]. Адже навіть здорові на перший погляд коти можуть передавати бактерії через кілька місяців або навіть років після первинного зараження.
Висновки
1. Наведені клінічні випадки свідчать, що інфікування B.henselae слід враховувати в усіх випадках лімфаденопатії в поєднанні зі шкірними висипаннями для забезпечення ранньої діагностики і відповідного лікування, запобігання ускладненням, особливо за умови контакту дитини з котами.
2. Серед критеріїв діагностики ХКП суттєве значення мають дані епідемічного анамнезу (контакт з котами). З профілактичних заходів вирішальне значення має боротьба з блохами у тварин.
Конфлікт інтересів. Автори заявляють про відсутність конфлікту інтересів і власної фінансової зацікавленості при підготовці даної статті.
Інформація про фінансування. Робота проводилась за рахунок ресурсів авторів проєкту.
Внесок авторів. Прокопів О.В. — концепція та дизайн, аналіз та інтерпретація даних, аналіз літератури, написання тексту, редагування, остаточне затвердження статті; Лишенюк С.А. — концепція та дизайн, аналіз та інтерпретація даних, аналіз літератури, написання тексту, редагування; Жуковський В.С. — збір даних, написання тексту; Кармазин Г.М. — збір даних, аналіз літератури.
Отримано/Received 02.08.2023
Рецензовано/Revised 11.08.2023
Прийнято до друку/Accepted 20.08.2023
Список литературы
1. Amin O., Rostad C.A., Gonzalez M., Rostad B.S., Caltharp S., Quincer E. et al. Cat Scratch Disease: 9 Years of Experience at a Pediatric Center. Open Forum Infect. Dis. 2022 Aug 20. 9(9). ofac426. doi: 10.1093/ofid/ofac426.
2. Fusani L., Venturini E., Chiappini E., Galli L. Cat scratch disease in childhood: a 10-year experience of an Italian tertiary care children's hospital. World J. Pediatr. 2022 Sep 13. doi: 10.1007/s12519-022-00616-3.
3. Nawrocki C.C., Max R.J., Marzec N.S., Nelson C.A. Atypical Manifestations of Cat-Scratch Disease, United States, 2005–2014. Emerg. Infect. Dis. 2020 Jul. 26(7). 1438-1446. doi: 10.3201/eid2607.200034.
4. Johnson S.C., Kosut J., Ching N. Disseminated Cat Scratch Disease in Pediatric Patients in Hawai’i. Hawaii J. Health Soc. Welf. 2020 May 1. 79 (5 Suppl. 1). 64-70. PMID: 32490388; PMCID: PMC7260883.
5. Nelson C.A., Saha S., Mead P.S. Cat-Scratch Disease in the Uni–ted States, 2005–2013. Emerg. Infect. Dis. 2016 Oct. 22(10). 1741-6. doi: 10.3201/eid2210.160115.
6. Rodríguez Alonso B., Alonso-Sardón M., Rodrigues Almeida H.M., Romero-Alegria Á., Pardo-Lledias J., Velasco-Tirado V. et al. Epidemiological of cat scratch disease among inpatients in the Spanish health system (1997–2015). Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2021 Apr. 40(4). 849-857. doi: 10.1007/s10096-020-04087-0.
7. Mennini M., Valentini D., Di Camillo C., Vittucci A.C., Gran–din A., Lancella L., Bartuli A., Villani A. Bartonella henselae in Italy: a rare seasonal infection. Minerva Pediatr. 2019 Oct. 71(5). 415-419. doi: 10.23736/S0026-4946.16.04414-5.
8. Chang C.C., Lee C.J., Ou L.S., Wang C.J., Huang Y.C. Disseminated cat-scratch disease: case report and review of the li–terature. Paediatr. Int. Child Health. 2016. 36(3). 232-234. doi: 10.1179/2046905515Y.0000000005.
9. Sandoval A.C., Reyes F.T., Prado M.A., Peña A.L., Viviani T.N. Cat-scratch Disease in the Pediatric Population: 6 Years of Evaluation and Follow-up in a Public Hospital in Chile. Pediatr. Infect. Dis. J. 2020 Oct. 39(10). 889-893. doi: 10.1097/INF.0000000000002708.
10. Okaro U., George S., Anderson B. What Is in a Cat Scratch? Growth of Bartonella henselae in a Biofilm. Microorganisms. 2021 Apr 14. 9(4). 835. doi: 10.3390/microorganisms9040835.
11. Huang H.H.H., Power R.I., Mathews K.O., Ma G.C., Bosward K.L., Šlapeta J. Cat fleas (Ctenocephalides felis clade ‘Sydney’) are dominant fleas on dogs and cats in New South Wales, Australia: Presence of flea-borne Rickettsia felis, Bartonella spp. but absence of Coxiella burnetii DNA. Curr. Res. Parasitol. Vector. Borne Dis. 2021 Jul 30. 1. 100045. doi: 10.1016/j.crpvbd.2021.100045.
12. Helan J.V.G., Grinberg A., Gedye K., Potter M.A., Harrus S. Molecular detection of Bartonella coopersplainsensis and B.henselae in rats from New Zealand. N. Z. Vet. J. 2018 Sep. 66(5). 257-260. doi: 10.1080/00480169.2018.1483781.
13. Sanguinetti-Morelli D., Angelakis E., Richet H., Davoust B., Rolain J.M., Raoult D. Seasonality of cat-scratch disease, France, 1999–2009. Emerg. Infect. Dis. 2011 pr. 17(4). 705-7. doi: 10.3201/eid1704.100825.
14. Lamps L.W., Scott M.A. Cat-scratch disease: historic, clinical, and pathologic perspectives. Am. J. Clin. Pathol. 2004 Jun. 121 Suppl. S71-80. doi: 10.1309/JC8YM53L4E0L6PT5.
15. Landes M., Maor Y., Mercer D., Habot-Wilner Z., Bilavsky E., Chazan B. et al. Cat scratch disease presenting as fever of unknown origin is a unique clinical syndrome. Clin. Infec. Dis. 2020. 71. 2818-24. doi: 10.1093/cid/ciz1137.
16. Maria H.K.S., Gazzoli E., Drummond M.R., Almeida A.R., Santos L.S.D., Pereira R.M., Tresoldi A.T., Velho P.E.N.F. Two-year history of lymphadenopathy and fever caused by Bartonella henselae in a child. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 2022 Feb 16. 64. e15. doi: 10.1590/S1678-9946202264015.
17. Göbel M., Gschnell M. Wen(n) die Katze kratzt: Pruriginöse Papeln und Noduli nach Katzenkratzer. Dermatologie (Heidelb). 2023 Feb. 74(2). 126-128. German. doi: 10.1007/s00105-022-050559.
18. Salicio-Bermejo Y., Cilla-Eguiluz G., Blanco-Esteban A., Martin-Peñaranda T., Grandioso-Vas D., Echeverría-Irigoyen M.J. Neuroretinitis caused by Bartonella henselae in Gipuzkoa, 2014–2019. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. (Engl. Ed.). 2021 Nov. 39(9). 451-453. DOI: 10.1016/j.eimce.2021.08.001.
19. Fan J., Ali H. Cat scratch disease causing encephalitis. Proc. (Bayl. Univ. Med. Cent.). 2020 Apr 24. 33(3). 440-441. doi: 10.1080/08998280.2020.1756141.
20. Dusser P., Eyssette-Guerreau S., Koné-Paut I. Ostéomyélite dans la maladie des griffes du chat: à propos d’un cas et revue de la littérature. Arch. Pediatr. 2013 Jun. 20(6). 624-8. French. doi: 10.1016/j.arcped.2013.03.013.
21. Wakiguchi H., Okamoto Y., Matsunaga M. et al. Multiple Renal and Splenic Lesions in Cat Scratch Disease. Jpn. J. Infect. Dis. 2016. 69(5). 424-425 doi: 10.7883/yoken.JJID.2015.3620.
22. Šlapeta Š., Šlapeta J. Molecular identity of cat fleas (Ctenocephalides felis) from cats in Georgia, USA carrying Bartonella clarridgeiae, Bartonella henselae and Rickettsia sp. RF2125. Vet. Parasitol. Reg. Stud. Reports. 2016 Jun. 3–4. 36-40. doi: 10.1016/j.vprsr.2016.06.005.
23. Okrent Smolar A.L., Breitschwerdt E.B., Phillips P.H., Newman N.J., Biousse V. Cat scratch disease: What to do with the cat? Am. J. Ophthalmol. Case Rep. 2022 Sep 9. 28. 101702. doi: 10.1016/j.ajoc.2022.101702.