Газета «Новости медицины и фармации» Акушерство и гинекология (597) 2016 (тематический номер)
Вернуться к номеру
Влияние нифуратела на вагинальную флору в условиях in vitro: можно ли рассматривать данный препарат как оптимальное средство для лечения бактериального вагиноза?
Авторы: Togni G.(1), Battini V.(2), Bulgheroni A.(3), Mailland F.(3), Caserini M.(3), Mendling W.(4)
(1) — Microbiology Laboratory, Unilabs SA, Coppet, Switzerland
(2) — Microbiology Laboratory, IPAS Institute, Ligornetto, Switzerland
(3) — Scientific Department, Polichem SA, Lugano, Switzerland
(4) — Vivantes Clinic for Obstetrics and Gynecology, Berlin, Germany
Рубрики: Акушерство и гинекология
Разделы: Клинические исследования
Версия для печати
Целью исследования было изучение потенциала нифуратела в лечении бактериального вагиноза и сравнение его действия с метронидазолом и клиндамицином в отношении G.vaginalis, А.vaginae и лактобактерий. Материал и методы. Было проведено исследование выращенных и идентифицированных в соответствии со стандартными протоколами клинических изолятов из вагинальных мазков, а также эталонных штаммов бактерий. Рабочие растворы были получены при помощи серийного двукратного разведения в DM80 (нифурател и метронидазол) или в воде (клиндамицин). Инокуляты были подготовлены в бульоне для бруцелл по 0,5 стандарту McFarland. В бруцеллезный агар добавляли 5 мкг гемина, 21 мкг витамина K на 1 мл и 5% овечью кровь (Labobasi), а также антибиотик в соответствующей концентрации, после чего проводили инокуляцию при помощи 2 мкг бактериальной суспензии и инкубировали в течение 3 дней при температуре 36 ± 1°С в анаэробных условиях (А.vaginae) или в атмосфере, обогащенной CO2 (G.vaginalis и Lactobacillus spp.). Результаты. Клиндамицин показал высокую активность в отношении G.vaginalis (МИК для 90 % исследованных штаммов (МИК90) составила 0,25 мкг/мл)
и А.vaginae (МИК90 < 0,125 мкг/мл). Метронидазол продемонстрировал частичную активность в отношении G.vaginalis (МИК8 в диапазоне от < 0,125 до 256 мкг/мл) и А.vaginae (МИК8 в диапазоне от 8 до 256 мкг/мл). Нифурател показал большую активность в отношении G.vaginalis и А.vaginae, чем метронидазол, с МИК8 в диапазоне от < 0,125 до 4 мкг/мл и от < 0,125 до 1 мкг/мл соответственно. Все исследованные штаммы Lactobacillus показали высокую чувствительность к клиндамицину (МИК8 в диапазоне от 0,125 до 1 мкг/мл) и устойчивость к метронидазолу (МИК > 256 мкг/мл). В целом нифурател не был эффективен в отношении молочнокислых бактерий (МИК50 > 256 мкг/мл). Выводы. Нифурател имеет широкий спектр антибактериальной активности, обладая высокой специфичностью по отношению к G.vaginalis и А.vaginae, и не оказывает влияния на лактобациллы.
бактериальный вагиноз; G.vaginalis; А.vaginae; Lactobacillus; нифурател; антибактериальная активность
Статья опубликована на с. 12-15
Микробная флора влагалища содержит высокие концентрации сложных сообществ бактерий [11, 21]. Здесь в основном преобладают молочнокислые бактерии, которые поддерживают кислую pН и вырабатывают молочную кислоту [14]. Изменения в данной экосистеме могут привести к развитию бактериального вагиноза (БВ) и кандидозного вагинита, на долю которых приходится 90 % вагинальных инфекций [10].
1. Bradshaw C.S. et al. The association of Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis with bacterial vaginosis and recurrence after oral metronidazole therapy // J. Infect. Dis. — 2006. — 194. — 828-836.
2. Bradshaw C.S. et al. High recurrence rates of bacterial vaginosis over the course of 12 months after oral metronidazole therapy and factors associated with recurrence // J. Infect. Dis. — 2006. — 193. — 1478-1486.
3. Clinical and Laboratory Standards Institute. Methods for antimicrobial susceptibility testing of anaerobic bacteria; approved standard — 7th edition; M11-A7 and M11-S1. — Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne PA, 2007.
4. Coppi F., Bertagnolli V. Esperienze cliniche in urologia con il metilmercadone nuovo chemioterapico furanico // Urologia. — 1965. — 32. — 678-683.
5. De Backer E. et al. Antibiotic susceptibility of Atopobium vaginae // BMC Infect. Dis. — 2006. — 6. — 51.
6. De Backer E. et al. Quantitative determination by real-time PCR of four vaginal Lactobacillus species, Gardne-rella vaginalis and Atopobium vaginae indicates an inverse relationship between L.gasseri and L.iners // BMC Microbiol. — 2007. — 7. — 115.
7. Dubini F., Furneri P. Attività antimicrobica del nifuratel // G. Ital. Chemioter. — 1985. — 32. — 545-552.
8. Ferris M.J. et al. Association of Atopobium vaginae, a recently described metronidazole resistant anaerobe, with bacterial vaginosis // BMC Infect. Dis. — 2004. — 4. — 5.
9. Ferris M.J., Norori J., Zozaya-Hinchliffe M., Martin D.H. Cultivation-independent analysis of changes in bacterial vaginosis flora following treatment // J. Clin. Microbiol. — 2007. — 45. — 1016-1018.
10. Fleury F.J. Adult vaginitis // Clin. Obstet. Gynecol. — 1981. — 24. — 407-438.
11. Fredricks D.N., Fiedler T.L., Thomas K.K., Mitchell C.M., Marrazzo J.M. Changes in vaginal bacterial concentrations with intravaginal metronidazole therapy for bacterial vaginosis as assessed by quantitative PCR // J. Clin. Microbiol. — 2009. — 47. — 721-726.
12. Goldstein E.J. et al. In vitro activities of garenoxacin (BMS 284756) against 108 clinical isolates of Gardnerella vaginalis // Antimicrob. Agents Chemother. — 2002. — 46. — 3995-3996.
13. Greaves W.L., Chungafung J., Morris B., Haile A., Townsend J.L. Clindamycin versus metronidazole in the treatment of bacterial vaginosis // Obstet. Gynecol. — 1988. — 72. — 799-802.
14. Hawes S.E. et al. Hydrogen peroxide-producing lactobacilli and acquisition of vaginal infections // J. Infect. Dis. — 1996. — 174. — 1058-1063.
15. Kharsany A.B., Hoosen A.A., Van den Ende J. Antimicrobial susceptibilities of Gardnerella vaginalis // Antimicrob. Agents Chemother. — 1993. — 37. — 2733-2735.
16. Koumans E.H., Markowitz L.E., Hogan V. Indications for therapy and treatment recommendations for bacterial vaginosis in nonpregnant and pregnant women: a synthesis of data // Clin. Infect. Dis. — 2002. — 35. — 152-172.
17. Menard J.P., Fenollar F., Henry M., Bretelle F., Raoult D. Molecular quantification of Gardnerella vaginalis and Atopobium vaginae loads to predict bacterial vaginosis // Clin. Infect. Dis. — 2008. — 47. — 33-43.
18. Menard J.P. et al. High vaginal concentrations of Atopobium vaginae and Gardnerella vaginalis in women undergoing preterm labor // Obstet. Gynecol. — 2010. — 115. — 134-140.
19. Mendling W., Poli A., Magnani P. Clinical effects of nifuratel in vulvovaginal infections. A meta-analysis of metronidazole-controlled trials // Arzneimittelforschung. — 2002. — 52. — 725-730.
20. Nagaraja P. Antibiotic resistance of Gardnerella vaginalis in recurrent bacterial vaginosis // Indian J. Med. Microbiol. — 2008. — 26. — 155-157.
21. Oakley B.B., Fiedler T.L., Marrazzo J.M., Fredricks D.N. Diversity of human vaginal bacterial communities and associations with clinically defined bacterial vaginosis // Appl. Environ. Microbiol. — 2008. — 74. — 4898-4909.
22. Savoia D., Leoncavallo N. Investigaciones comparativas sobre algunos compuestos de actividad tricomonicida // Ginecol. Obstet. Mex. — 1970. — 20. — 557-562.
23. Schwiertz A., Taras D., Rusch K., Rusch V. Throwing the dice for the diagnosis of vaginal complaints? // Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. — 2006. — 5. — 4.
24. Sobel J.D. What’s new in bacterial vaginosis and trichomoniasis? // Infect. Dis. Clin. North Am. — 2005. — 19. — 387-406.
25. Swidsinski A. et al. Adherent biofilms in bacterial vaginosis // Obstet. Gynecol. — 2005. — 106. — 1013-1023.
26. Swidsinski A. et al. An adherent Gardnerella vaginalis biofilm persists on the vaginal epithelium after standard therapy with oral metronidazole // Am. J. Obstet. Gynecol. — 2008. — 198. — 97. — e1-6.
27. Verhelst R. et al. Cloning of 16S rRNA genes amplified from normal and disturbed vaginal microflora suggests a strong association between Atopobium vaginae, Gardne-rella vaginalis and bacterial vaginosis // BMC Microbiol. — 2004. — 4. — 16.
28. Verstraelen H. et al. Longitudinal analysis of the vaginal microflora in pregnancy suggests that L. crispatus promotes the stability of the normal vaginal microflora and that L.gasseri and/or L.iners are more conducive to the occurrence of abnormal vaginal microflora // BMC Microbiol. — 2009. — 9. — 116-125.
29. Zucol F. et al. Real-time quantitative broad-range PCR assay for detection of the 16S rRNA gene followed by sequencing for species identification // J. Clin. Microbiol. — 2006. — 44. — 2750-2759.